Инфекционный ринотрахеит
Инфекционный ринотрахеит
Инфекционный ринотрахеит (ИРТ) — высококонтагиозное заболевание крупного рогатого скота. Для него характерна лихорадка, одышка, ринит, синусит, ларингит, конъюнктивит и трахеит. Наряду с поражением дыхательных путей заболевание может проявляться в генитальной форме с острым, реже подострым и хроническим течением.
Возбудитель — ДНК-содержащий герпетический вирус, впервые выделенный в 1956 г. в США. Вирион имеет диаметр до 104 нм. До 80 % вирионов не имеют оболочки.
Под воздействием солнечных лучей вирус инактивируется за 48 ч, 5%-ного раствора формалина — за 1 мин, 0,5%-ного раствора едкого натра — за 30 с. При температуре 56 °С он утрачивает инфекционность через 20 мин, 37° — в течение 10 дней, 22° — через 50 дней. Вирус устойчив во внешней среде и при хранении в холодильнике при t 2—4 °С и — 20 °С.
Так, по нашим наблюдениям, эпизоотический штамм, выделенный от больного теленка при t —20°С, сохранял патогенные свойства в течение 12 мес для животных и культуры клеток, а в патологическом материале — 9 мес. Цитопатогенное действие вируса характеризовалось появлением отдельных очагов округленных клеток и образованием гроздьевидных скоплений с тонкими перетяжками через 18—48 ч, в зависимости от заражающей дозы. Затем наблюдалось быстрое диффузное округление клеток, находящихся рядом с очагами дегенерации. Очаги дегенерации сливались, в результате чего поражался весь монослой и наблюдалось отторжение его в поверхности стекла.
Эпизоотология.
Болезнь широко распространена и наносит большой экономический ущерб в различных странах мира. В СССР ИРТ впервые диагностирован в 1986 г. в Тамбовской области (Н. Н. Крюков и соавт., 1970). В Белоруссии заболевание выявлено нами в 1977 г. в ряде хозяйств среди откормочных телят (С. И. Музычин и др., 1980). В естественных условиях к вирусу ИРТ восприимчив крупный рогатый скот разных возрастов. Заболеваемость животных может достигать 90— 100 %, смертность колеблется от 2 до 10 %, вынужденный убой — до 15 %. Более тяжело болеет молодняк крупного рогатого скота в возрасте от нескольких дней до 12—15 мес. Болезнь проявляется чаще в осенне-зимне-весенний период. Источником инфекции являются больные и переболевшие животные,'которые еще выделяют вирус в течение 2—4 недель. Основные пути передачи инфекции — воздушно-капельный, половой, через инфицированные корма и др. Лабораторные животные невосприимчивы к вирусу.
Патогенез.
Вирус ИРТ попадает на слизистую оболочку носовой полости, глаз, половых путей и размножается в чувствительных клетках. Затем он с кровью разносится по организму, вызывая общую реакцию. У стельных коров вирус может проникать через плаценту и плод и вызывать аборт.
Клинические признаки и патолого-анатомические изменения. Описано несколько форм течения болезни: респираторная, генитальная, энцефалиты и конъюнктивиты. В Белоруссии нами диагностировано и описано заболевание среди откормочных животных в виде респираторной формы. Клиническая картина заболевания характеризовалась следующими признаками: температура тела повышалась до 40,3—41,5 °С, на 2—3-й день наблюдался сухой, а затем влажный кашель, одышка, угнетение, анарексия; серозное, слизисто-гнойное истечение из носовой полости, слюнотечение, гиперемия и отечность слизистой носа и конъюнктивы; серозные истечения из глаз; на конъюнктивеу некоторых животных сыпь сероватого цвета. На слизистой языка иногда появлялись язвы. Диарея отмечалась редко.
При экспериментальном заражении вирусом ИРТ телят 2—4-месячного возраста обычно у них наблюдались характерные симптомы для поражения верхних дыхательных путей.
При генитальной форме у коров и телок развивается пустулезный вульвовагинит, характеризующийся гиперемией слизистой влагалища, образованием узелков и пузырьков на поверхности вульвы. Позднее на наружных половых органах появляются многочисленные пустулы, которые, сливаясь, образуют темноватые пленки (псевдомембраны). При отделении пленок под ними обнаруживают язвы. В этот период течения болезни отмечается припухание вульвы, учащаются позывы к мочеиспусканию, животные часто переступают задними ногами и изгибают спину (В. В. Гуненков, 1973). У стельных животных могут происходить аборты. У быков поражается пенис и препуций с появлением отечности, пустул, изъязвлений, кровоизлияний и болезненности.
У молодых телят менингоэнцефалит протекает с повышением температуры тела, конъюктивита, возбуждения манежных движений, тремора мышц. Животные обычно погибают с явлениями поражения нервной системы.
При конъюнктивальной форме отмечается гиперемия, отечность слизистой оболочки, выделения из глаз.
По данным многих исследователей и нашим наблюдениям, при вскрытии животных, больных респираторной формой ИРТ, устанавливается катаральное воспаление слизистой оболочки носовой полости, которое нередко распространяется на гортань и трахею, очаги некроза и кровоизлияния, дифтеритические пленки на слизистой верхних дыхательных путей, эмфизема легких, скопление пенистой жидкости в трахее и бронхах. Часто обнаруживается бронхопневмония. Лимфатические узлы отечны, гиперемированы, увеличены, на разрезе сочны, с кровоизлияниями.
При генитальной форме наблюдают гиперемию слизистой влагалища, пустулы, очаги некроза. У самцов отмечаются аналогичные изменения на пенисе и препуции.
При менингоэнцефалитах обнаруживается негнойный менингоэнцефалит. Гистологически при менингоэнцефалитах в головном мозгу отмечается набухание, пролиферация и деск-вамация клеток эндотелия кровеносных сосудов. Иногда наблюдаются слабые периваскулиты. В продолговатом мозгу находят множественные пери- и эндоваскулиты и очаги пролиферации.
Диагноз.
Респираторные заболевания, обусловленные вирусом ИРТ, имеют сходные клинико-морфологические признаки и эпизоотологические данные с респираторными заболеваниями, вызванными другими пневмотропными вирусами. Однако для ИРТ более характерно тяжелое течение болезни, поражение животных разных возрастных групп без выраженной сезонности. При постановке диагноза большую роль играют лабораторные методы исследований. В настоящее время разработан метод диагностики с помощью флуоресцирующих антител по обнаружению антигена вируса ЙРТ в мазках-отпечатках из носовой полости, препуция, влагалища и др.
Ценным диагностическим тестом служит изоляция и идентификация возбудителя. Вирус хорошо репродуцируется уже в первых пассажах на трипсинизированной почке эмбриона коров (ПЭК), вызывает цитопатическое действие (ЦПД) через 24—48 ч при заражении неразведенными носовыми секретами или центрифугатом суспензии из легких при разведении 1:5. По нашим наблюдениям, для ускорения идентификации возбудителя параллельно с его выделением следует проводить нейтрализацию специфической сывороткой материала, используемого для заражения культуры клеток.
Для ретроспективной диагностики наиболее надежной является реакция нейтрализации (РН) с парными пробами сывороток крови. Сыворотки крови переболевших животных нейтрализуют культуральный вирус в дозе 100 ТЦДбо в разведении 1 : 4—1 : 32, более высокие титры встречаются редко. Молозив-ные антитела в титре 1 : 8 у новорожденных- телят нашей республики обнаруживаются в ряде хозяйств. У коров высокие титры вируснейтрализующих антител в разведении 1 : 16—1 : 128 без клинического проявления заболевания мы обнаружили в 3 из 7 обследованных хозяйств, что свидетельствует о персистенции возбудителя в организме.
Перспективным методом диагностики ИРТ является РИГА. Предложенный для этой цели диагностикум с положительным результатом прошел производственную проверку и в настоящее время внедряется в производство (В. В. Васильев, 1986). В Московской ветакадемии разработан иммуноферментный метод определения антител в сыворотке крови, позволяющий проводить массовое исследование животных.
Иммунитет, профилактика и меры борьбы.
Переболевшие животные приобретают невосприимчивость к повторному заражению и считаются резистентными до 3—5 лет. Однако у жи-вотных-реконвалесцентов, имеющих антитела, состояние абсолютной невосприимчивости бывает редко и поэтому их следует рассматривать как потенциальный источник инфицирования других животных (В. Н. Сюрин, Н. В. Фомина, 1979).
В сыворотке крови иммунных животных обнаруживают ви-руснейтрализующие и преципитирующие антитела. В иммунитете при ИРТ важную роль играют секреторные антитела, интерферон, неспецифические ингибиторы, альвеолярные макрофаги.
Нами изучалась динамика сывороточных и секреторных антител у животных с различным иммунологическим статусом при экспериментальной иммунизации телят против ИРТ. При этом установлено, что у телят с отсутствием сывороточных и секреторных антител после иммунизации в сыворотке крови антитела обнаружены с 10—15-го дня в титре 2—3 log2, кото- . рый увеличивался до 21—28-го дня (4—5 log2) и в последующие сроки уровень антител медленно снижался. Антитела в носовых секретах у этих же животных обнаруживали, начиная с 6—8-го дня в титре 0,75—2,5 log2, которые сохранялись до 21-го дня и затем снижались.
У животных с наличием сывороточных и секреторных антител прироста антител после первой интраназальной иммунизации не установлено, а после реиммунизации через 21 день отмечен дальнейший синтез сывороточных и секреторных антител.
По нашим данным, молозивные антитела у телят, матери которых были вакцинированы, сохранялись в крови до 3—4-месячного возраста.
Для профилактики болезни за рубежом и в нашей стране применяют инактивированные и живые вакцины. В репродук-торных молочных комплексах и комплексах по выращиванию племенного молодняка рекомендуется использовать инактиви-рованную вакцину (МВА), а в откормочных хозяйствах можно применять живую вакцину (ВИЭВ). Вакцины вводятся подкожно. Иммунитет у животных, привитых аттенуированной вакциной, сохраняется до 1 года, а инактивированной — 6 мес.
В нашей стране сотрудниками МВА, БелНИИЭВ, ВГНКИ ветпрепаратов разработана бивалентная вакцина «Бивак» против парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. Препарат оказался безвредным и высокоимму-ногенным при интраназальном применении для телят и стельных коров в экспериментальных и производственных условиях. Антигенная активность вирус-вакцины при интраназальном применении выше, чем при внутримышечном.
Противоэпизоотическая эффективность вакцины была изучена в неблагополучных и угрожаемых по инфекционному ринотрахеиту и парагриппу-3 хозяйствах Белоруссии. Всего вакцинировано 16 641 животное. В качестве контроля служили невакцинированные телята (7829) голов). Вакцину вводили интраназально в дозе 2Х10-5 ТЦД/мл дважды с интервалом 21—28 дней. За животными вели клиническое наблюдение с измерением температуры тела, а также учитывали прирост и себестоимость 1 ц прироста живой массы. Результаты клинического наблюдения показали, что вакцина не оказывала отрицательного действия на организм животных. Все животные охотно принимали корм, у отдельных отмечали кратковременное повышение температуры тела на 0,5—1,0 °С, незначительные слизистые истечения из носовой полости.
Анализ полученных данных свидетельствует о том, что среди невакцинированных заболело 5225 животных, или 66,74 %, пало и вынужденно убито 598, или 5,08 %, среднесуточный прирост на 1 голову составил 416,8 г, затраты на лечение одного животного—15,62 руб., себестоимость 1 ц живой массы — 215,04 руб. Среди вакцинированных заболело 651 животное, или 6,4% (на 60,14% меньше), пали и вынужденно убиты 97 голов, или 0,95 % (на 4,03 % меньше), среднесуточный прирост составил 505,2 г (на 88,4 г больше), затраты на лечение одного животного — 5,95 руб. (на 9,87 руб. меньше), себестоимость 1 ц живой массы—196,01 руб. (на 19,3 руб. меньше).
Случаев поствакцинальных осложнений после применения вакцины «Бивак» не отмечено.
Лечение должно быть направлено на повышение резистентности организма, борьбу с секундарной инфекцией путем применения антибиотиков, сульфаниламидов, симптоматических средств и др. Положительный лечебно-профилактический эффект дает использование моно- и поливалентных гипериммунных сывороток, а также сыворотки реконвалесцентов.
Все права защищены. Copyright © 2008 Vetpharma. При перепечатке материала ссылка на сайт источник ОБЯЗАТЕЛЬНА!
Метки: аборт, вагинит, вакцина, ветпрепарат, вирус, диагноз, инфекционный ринотрахеит, крупного рогатого скота, лечение, пневмония, профилактика, раны, рожа, язвы
Для специфической профилактики используют живые и инактивированные моно- и ассоциированные вакцины, гипериммунные сыворотки. Для ликвидации заболевания используют общие противоэпизоотические мероприятия – ограничение движения скота, дезинфекция, карантинирование больных животных.